УДК 619:616.995.122

Васильева Е.А., Марченко В.А., Ефремова Е.А. (ГНУ ИЭВСиДВ)

Эффективность и чувствительность методов копрологической диагностики дикроцелиоза жвачных животных

В настоящее время предложено множество методов копрологической диагностики дикроцелиоза жвачных животных: метод последовательных промываний, эфирно-уксусной седиментации, флотации с насыщенным раствором нитрата свинца по Г.А. Котельникову и В.М. Хренову, модификации метода Дарлинга по И.А. Щербовичу, Г.А. Котельникову и В.М. Хренову и др. (Котельников Г.А., 1984). Сравнительная оценка некоторых методов копроовоскопии представлена в работах В.М. Хренова (1978), Л.С. Кац (1981),  М.Х. Лутфуллина (2002). Однако сегодня по прежнему существуют определенные трудности в выборе наиболее эффективного и простого в применении метода, которым могли бы легко воспользоваться ветеринарные врачи лабораторий при исследовании жвачных животных на дикроцелиоз.

Для сравнительного изучения чувствительности методов копроовоскопии нами были выбраны следующие: метод последовательных промываний, эфирно-уксусной седиментации, флотации с насыщенным раствором нитрата свинца по Г.А. Котельникову и В.М. Хренову, флотации с насыщенным раствором хлорида цинка по Г.А. Котельникову и А.А. Вареничевую. Метод флотации с раствором хлорида цинка предложен авторами для диагностики описторхоза плотоядных животных и апробирован нами для выявления яиц дикроцелиев. При постановке опытов были использованы пробы фекалий крупного рогатого скота, исследованные на наличие яиц трематод и давшие отрицательный результат. В каждую пробу были помещены яйца, извлеченные из дикроцелия и предварительно подсчитанные. Регламент определения флотационной способности насыщенных растворов нитрата свинца и хлорида цинка следующий: объем флотационной жидкости составил 5 мл, время флотации - 15 мин, количество исследуемой жидкости соответствовало изучаемым методам.  Для определения эффективности каждого метода опыт проведен в 10 повторениях. Полученные величины подвергнуты биометрической обработке по критерию Стьюдента.

Установлено, что эффективность метода флотации с нитратом свинца составила 60 %, остальные методы показали 100 %-ную эффективность. Однако количество яиц дикроцелиев, выявленных в пробах,  варьировало. Наибольшую чувствительность показали методы последовательных промываний (7.3 %) и эфирно-уксусной седиментации (3.6 %). Чувствительность методов флотации с раствором нитрата свинца и раствором хлорида цинка составила 0.006 и 0.06 %, соответственно   (Таблица 1).

Таблица 1. – Сравнительная оценка копрологических методов диагностики дикроцелиоза жвачных животных

Метод диагностики	Всего исследовано проб	Среднее кол-во яиц дикроцелия в пробе	Среднее кол-во яиц, выявленных в пробе, %
Метод последовательных промываний	10	10 292	7.3
Метод  эфирно-уксусной седиментации	10	11 363	3.6
Метод флотации с раствором нитрата свинца	10	14 298	0.006
Метод флотации с раствором хлорида цинка	10	11 370	0.06

Однако изучение флотационной способности чистых растворов солей показало, что в поверхностной пленке насыщенных растворов нитрата свинца и хлорида цинка можно выявить в среднем 16.9 и 20.2 % яиц дикроцелиев, соответственно (Таблица 2). Таким образом, не переваренные остатки корма, также поднимающиеся в верхние слои насыщенных растворов исследуемых солей, задерживают флотацию яиц дикроцелиев, являясь одной из причин низкой эффективности соответствующих методов.

Таблица 2. – Сравнительная оценка флотационной способности насыщенных растворов, используемых для диагностики дикроцелиоза жвачных животных

Раствор	Всего исследовано проб	Среднее кол-во яиц дикроцелия в пробе	Среднее кол-во яиц, выявленных в пробе, %
Насыщенный раствор нитрата свинца	10	7 108	16.9
Насыщенный раствор хлорида цинка	10	7 009	20.2

Несмотря на меньшую чувствительность флотационные методы обладают значительными преимуществами в отношении временных затрат на исследование пробы. Микроскопия поверхностной пленки не утомляет зрение, а яйца дикроцелиев даже при наличии деформации легко идентифицируемы. Из двух изучаемых растворов раствор хлорида цинка более устойчив при хранении и не кристаллизуется на предметном стекле во время микроскопии.

Таким образом, мы считаем метод Г.А. Котельникова и А.А. Вареничева наиболее перспективным для применения на практике с целью диагностики дикроцелиоза жвачных животных, но требующим дальнейшего усовершенствования.

Литература

1. Котельников Г.А. Гельминтологические исследования животных и окружающей среды. – М., 1984. – С.46.

2. Хренов В.М. Усовершенствование копроскопической диагностики гельминтозов жвачных и свиней: Автореф. …канд. вет. наук. – М., 1978. – 24 с.

3. Кац Л.С. Усовершенствование метода прижизненной диагностики трематодозных заболеваний/ Науч.-тех. бюллетень. – Вып.50. – Новосибирск, 1981. – С.31-34.

4. Лутфуллин М.Х. Метод Щербовича для диагностики трематодозов/ М.Х. Лутфуллин, Д.Г. Латыпов, Г.Г. Горшкова, Р.Р. Тимербаева // Ветеринарный  консультант. – 2002. №11-12. – С.14-15.

EFFICACY OF FECAL TECHNIQUES USED FOR DIAGNOSTICS OF RUMINANT DICROCOELIASIS

E.A. Vasilyeva, V.A. Marchenko, E.A. Efremova

Common sedimentation technique, ether-sedimentation technique and egg-flotation procedures (Kotelnikov&Hrenov, Kotelnikov&Varenichev) were estimated to compare of their efficacy. 7.3 and 3.9 % Dicrocoelium eggs were revealed by  common sedimentation and ether-sedimentation techniques, respectively. Efficacy of  egg-flotation procedures was significantly less. However, 20.2 % eggs were found by flotation in pure saturated zinc chloride solution. Thus, egg-flotation procedure (Kotelnikov&Varenichev) might be used for diagnostic of ruminant dicrocoeliasis after some modifications increased its efficacy.